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聚合酶鏈反應(yīng)（polymerase chain reaction，PCR）技術(shù)，是一種非常強(qiáng)大的技術(shù)，可以通過(guò)一種非常簡(jiǎn)單但是高效的方法來(lái)復(fù)制DNA，它可看作是生物體外的特殊DNA復(fù)制，PCR的最大特點(diǎn)是能將微量的DNA大幅增加。PCR反應(yīng)的關(guān)鍵因素主要有引物的選擇與設(shè)計(jì)，酶的質(zhì)量。模板的制備，在前二者都穩(wěn)定可行的情況下，PCR模板的制備尤為重要。模板處理方法的選擇及操作人員的基 本技能，決定分離模板核酸(DNA或RNA)的質(zhì)和量及PCR的成敗。而提高模板核酸質(zhì)量的 關(guān)鍵是除去雜質(zhì)(蛋白質(zhì)、酶、脂肪等)。除去抑制Taq DNA聚合酶活性抑制因子，提高模板核酸的產(chǎn)量。

傳統(tǒng)的核酸模板提取方法是采用去垢劑如SDS等來(lái)破壞細(xì)胞組份，溶解細(xì)胞膜，使蛋白質(zhì)變性，再用蛋白酶K來(lái)消化去除蛋白質(zhì)，尤其是與DNA結(jié)合的蛋白質(zhì)，再用酚:抽提，然后用乙醇或異丙醇沉淀核酸，供PCR實(shí)驗(yàn)用。但近幾年來(lái)也發(fā)展了些 簡(jiǎn)便實(shí)用較為有效的標(biāo)本消化處理方法。亦可滿足PCR實(shí)驗(yàn)的要求。采用哪種方法消化 處理標(biāo)本，視PCR實(shí)驗(yàn)的目的(是科研還是檢測(cè))及環(huán)境條件而定。

模板核酸的提取制備方法:

一、蛋白酶K消化裂解法：適用于所有標(biāo)本的消化處理，尤以DNA樣品為佳。如組 織細(xì)胞(包括石蠟包埋組織)絨毛、毛發(fā)、精斑、血液(血清、血漿、全血)局部分泌 物、尿，糞便等。

1、試劑配制

1）蛋白酶K消化液:10mmol/L Tris.cl(PH8.0)

10mmol/LEDTA

150mmol/LNaCL

0.5%SDS

100～200ug/ml蛋白酶K.

2）蛋白酶K最好用水配成20mg/ml，臨用時(shí)加入消化液中。

2、提取方法:

有些標(biāo)本、在用蛋白酶K消化前，還需預(yù)處理一下，如糞便、分泌物、痰液、組 織塊、石蠟包埋組織等，其方法有離心去掉雜質(zhì)，脫蠟等。

臨床標(biāo)本或經(jīng)預(yù)處理的標(biāo)本加蛋白酶K裂解液50～100ul.混勻，55℃1～3小時(shí)， 或37℃過(guò)夜。加等體積的飽和酚抽提1～2次，再加等體積的:(49:1)抽提一 次，上清加入1/10體積的pH值5.23mmol/L醋酸鈉緩沖液，加入2.5倍體積的冰冷無(wú)水 乙醇(或加等體積的異丙醇)-20℃放置至少3h.取出后14000轉(zhuǎn)/min離心15min.小心吸 棄或倒出上清，沉淀加入75%冰冷乙醇15000r/min5min離心洗滌1～2次，特別小心的 吸棄或倒掉上清，真空或37℃溫箱或室溫干燥，加TE緩沖液20ul.溶解后，取3～8ul 用于PCR擴(kuò)增，或放-20℃保存。

蛋白酶K消化法除上述經(jīng)典處理法外，亦可在蛋白K消化處理標(biāo)本，經(jīng)離心處理 后，吸取上清經(jīng)95～97℃或煮沸10min滅活蛋白酶K后，直接作核酸模板用于PCR擴(kuò)增。 如雜質(zhì)較多，還可經(jīng)酚:抽提后，即可用于PCR反應(yīng)。此法蛋白質(zhì)及其它雜質(zhì)消除 *，Taq酶活性不受影響，具有良好的重復(fù)性與穩(wěn)定性。但操作繁復(fù)，技術(shù)要求高。

二、直接裂解法: 標(biāo)本(組織細(xì)胞，分泌物)加PBS或生理鹽水離心洗滌后，加消化 裂解液20～50ul(0.5%NP-40和0.5%吐溫-20)，95～98℃，15～30min以裂解病原體，裂解細(xì)胞。然后12000r/min離心5～10min，取上清20～30ul用于PCR擴(kuò)增。血清標(biāo)本可 直加等體積的消化液，加熱處理離心后PCR擴(kuò)增。亦有用5%的NP-40和1.5%2-ME做裂解 液，95℃30min消化處理，離心取上清，PCR擴(kuò)增檢測(cè)HBV DNA.

三、堿變性法: 取血清20ul，加入1mol/L NaOH 20ul，37℃30min，離心，加 1mol/L HCl 20ul，離心后，取上清5ul，用于PCR擴(kuò)增。*亦有用10ul血清加NaOH至 0.2mol/L，37℃1h，再加HCL中和離心后取上清10ul做PCR，其特異性和敏感性較前法 更好。

四、煮沸法: 經(jīng)離心洗滌過(guò)的組織細(xì)胞，分泌物及血液標(biāo)本，加適量無(wú)菌蒸餾水或PBS，混勻 后，100℃煮沸10～15min，14000r/min 10min，取上清做PCR.

五、碘化鈉法: 取組織細(xì)胞及抗凝血液10～100ul，加等體積的6MNaI，反復(fù)輕混 20s，加等體積:(49:1)振勻后，離心取上清加0.6體積的異丙醇，混勻后 置室溫3min.14000r/min 10min，沉淀加10～100ul，TE溶解，取5～10ul做PCR，亦有 用100ul血清加裂解液300ul(6M NaI，0.5%十二烷基肌酸鈉，10ug糖原，26mmol/L pH8.0 Tris-HCL，13mmol/LEDTA)混勻后，60℃15min，加等體積異丙醇，離心沉定 后，加TE液用于PCR擴(kuò)增，其產(chǎn)量和質(zhì)量較高。

六、異硫氰酸胍法

此法主要用于RNA的提取。標(biāo)本為組織細(xì)胞及血清等。

1、異硫氰酸胍消化液

異硫氰酸胍4mol/L

檸檬酸鈉(PH7.0)25mmol/L

十二烷基肌酸鈉0.5%

β-巰基乙醇0.1mol/L

2、消化方法: 用50～100ul細(xì)胞懸液及血清，加等體積的異硫氰酸胍消化液振混勻 后，或65℃1小時(shí)，或室溫放置數(shù)分鐘，然后加1/10體積的3mmol/L pH5.2的醋酸鈉緩 沖液，再加等體積的酚:，用力振搖約10s，10000r/min，離心5min，取上清加等 體積異丙醇-20℃放置3h后，14000r/min離心15min，沉定用75%冰冷乙醇離心洗滌1～ 2次，真空干燥，沉淀用TE緩沖液溶解即可用于逆轉(zhuǎn)錄PCR擴(kuò)增，或放-20℃保存。

其它消化處理標(biāo)本提模板核酸的方法有①異硫氰酸胍一二氧化硅法②異硫氰酸胍-玻璃粉法。③Chelex-100法。④全血直接擴(kuò)增法⑤尿素消化裂解法。各有千秋，可根據(jù)情況選用。

活動(dòng)時(shí)間：8月3日-8月5日

本活動(dòng)權(quán)限終端客戶

 ELISA（enzyme linked immunosorbent assay）即酶聯(lián)吸附試驗(yàn)，是一種常用的固相酶免疫測(cè)定方法。血清是最常用的ELISA標(biāo)本，血漿一般可視為與血清同等的標(biāo)本，標(biāo)本引起的假陽(yáng)性和假陰性結(jié)果主要是干擾性物質(zhì)所致，分為內(nèi)源性物質(zhì)和外源性物質(zhì)兩種。

通常生化試劑盒可分為液體單試劑和液體雙試劑，前者特別適用于半自動(dòng)生化分析儀和小型自動(dòng)生化分析儀，使用方便，缺點(diǎn)是穩(wěn)定性較差。與單試劑相比，雙試劑提高了抗干擾能力，具有穩(wěn)定性能較好，可消除樣品自身空白等特點(diǎn)。此外還有多項(xiàng)同測(cè)組合試劑、濃縮試劑等。對(duì)新的試劑盒，我們首先要查看其資質(zhì)是否齊全，是否為合法有效試劑，是否有相關(guān)的試驗(yàn)驗(yàn)證等。其次，在本實(shí)驗(yàn)室，可做以下工作來(lái)進(jìn)行驗(yàn)證是否適合使用。

 細(xì)胞培養(yǎng)的傳代及日常維持過(guò)程中，在培養(yǎng)器具、培養(yǎng)液及各種準(zhǔn)備工作方面都需大量的耗費(fèi)，而且細(xì)胞一旦離開(kāi)活體開(kāi)始原代培養(yǎng)，它的各種生物特性都將逐漸發(fā)生變化并隨著傳代次數(shù)的增加和體外環(huán)境條件的變化而不斷有新的變化。因此及時(shí)進(jìn)行細(xì)胞凍存十分必要。細(xì)胞冷凍儲(chǔ)存在-70℃冰箱中可以保存一年之久；細(xì)胞儲(chǔ)存在液氮中，溫度達(dá)-196℃，理論上儲(chǔ)存時(shí)間是無(wú)限的。

在復(fù)性過(guò)程中引物與DNA模板鏈的結(jié)合是由堿基互補(bǔ)配對(duì)原理完成的。CR需要模板和酶，每一次循環(huán)都需要。酶的數(shù)量是固定的，但模板在每一次的延伸就一次用完就沒(méi)了。PCR反應(yīng)參數(shù)包括變性溫度和時(shí)間、復(fù)性溫度和時(shí)間、延伸溫度和時(shí)間、循環(huán)數(shù)四方面，在PCR反應(yīng)過(guò)程中都發(fā)揮著至關(guān)重要作用。